La coproculture est un examen bactériologique des selles visant à identifier les bactéries responsables d’infections digestives (diarrhées infectieuses, gastro-entérites, etc.). Voici le mode opératoire de la coproculture et la procédure pratique du déroulement de ce test au laboratoire.

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Coproculture : Technique

1. Prélèvement des selles

• Utiliser un récipient stérile (pot à selles).
• Prélever une petite quantité de selles (éviter contamination avec urine ou eau).
• Si selles liquides : prélever 2–5 mL.
• Si selles solides : prélever une noix (~2–3 g).
• Transport rapide au laboratoire (≤ 2 heures).
• Si délai : conserver à 4°C ou utiliser un milieu de transport (type Cary-Blair).

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2. Examen macroscopique

Observer :

• Couleur (normale, noire, rouge)
• Consistance (liquide, pâteuse, solide)
• Présence de mucus, sang ou parasites visibles

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3. Examen microscopique:

• Préparation à l’état frais (solution saline)
• Recherche de :
  • Leucocytes (infection bactérienne)
  • Hématies
  • bactéries mobiles : Campylobacter ..
  • Parasites (œufs, kystes)
  • levures

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4. Ensemencement des milieux de culture

À l’aide d’une anse stérile :

Milieux classiques utilisés :

• Gélose MacConkey
  → sélectionne les entérobactéries et différencie lactose + / –
• Gélose Hektoen
  → isolement de Salmonella et Shigella
• Gélose SS
  → spécifique Salmonella/Shigella
• Gélose XLD
  → différenciation entérobactéries pathogènes
• (optionnel) gélose Campylobacter, si suspicion

Technique :

• Strier en quadrants pour isolement des colonies

En pratique on utilise uniquement le milieu spécifique SS.

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5. Incubation

• Température : 35–37°C
• Durée : 18–24 h (jusqu’à 48 h si nécessaire)
• Atmosphère :
  • Aérobie pour la plupart
  • Microaérophile pour Campylobacter

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6. Lecture des cultures

Observer :

• Aspect des colonies (taille, couleur, forme)
• Lactose + (rose sur MacConkey) vs lactose – (incolore)
• Production de H₂S (colonies noires)

Exemples :

• Salmonella → colonies incolores avec centre noir
• Shigella → colonies incolores sans H₂S
• Escherichia coli → colonies roses (lactose +)

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7. Identification bactérienne

• Tests biochimiques :
  • Galerie API 20E
  • TSI, uréase, citrate…
• Identification automatisée possible (VITEK, MALDI-TOF)

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8. Antibiogramme

• Réalisé si bactérie pathogène isolée
• Méthode :
  • Diffusion sur disque (Kirby-Bauer)
• Permet de guider le traitement antibiotique

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9. Interprétation

• Présence ou absence de bactéries pathogènes
• Corrélation avec les symptômes cliniques
• Certaines bactéries peuvent être commensales → donc prudence

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Points importants

• Éviter prélèvement après antibiothérapie (faux négatifs)
• Prélèvements répétés parfois nécessaires
• Recherche ciblée selon contexte (voyage, épidémie…)