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La coproculture : Mode opératoire

La coproculture est un examen bactériologique des selles visant à identifier les bactéries responsables d’infections digestives (diarrhées infectieuses, gastro-entérites, etc.). Voici le mode opératoire de la coproculture et la procédure pratique du déroulement de ce test au laboratoire.


Coproculture : Technique

1. Prélèvement des selles

  • Utiliser un récipient stérile (pot à selles).
  • Prélever une petite quantité de selles (éviter contamination avec urine ou eau).
  • Si selles liquides : prélever 2–5 mL.
  • Si selles solides : prélever une noix (~2–3 g).
  • Transport rapide au laboratoire (≤ 2 heures).
  • Si délai : conserver à 4°C ou utiliser un milieu de transport (type Cary-Blair).

2. Examen macroscopique

Observer :

  • Couleur (normale, noire, rouge)
  • Consistance (liquide, pâteuse, solide)
  • Présence de mucus, sang ou parasites visibles

3. Examen microscopique:

  • Préparation à l’état frais (solution saline)
  • Recherche de :
    • Leucocytes (infection bactérienne)
    • Hématies
    • bactéries mobiles : Campylobacter ..
    • Parasites (œufs, kystes)
    • levures

4. Ensemencement des milieux de culture

À l’aide d’une anse stérile :

Milieux classiques utilisés :

  • Gélose MacConkey
    → sélectionne les entérobactéries et différencie lactose + / –
  • Gélose Hektoen
    → isolement de Salmonella et Shigella
  • Gélose SS
    → spécifique Salmonella/Shigella
  • Gélose XLD
    → différenciation entérobactéries pathogènes
  • (optionnel) gélose Campylobacter, si suspicion

Technique :

  • Strier en quadrants pour isolement des colonies

En pratique on utilise uniquement le milieu spécifique SS.


5. Incubation

  • Température : 35–37°C
  • Durée : 18–24 h (jusqu’à 48 h si nécessaire)
  • Atmosphère :
    • Aérobie pour la plupart
    • Microaérophile pour Campylobacter

6. Lecture des cultures

Observer :

  • Aspect des colonies (taille, couleur, forme)
  • Lactose + (rose sur MacConkey) vs lactose – (incolore)
  • Production de H₂S (colonies noires)

Exemples :

  • Salmonella → colonies incolores avec centre noir
  • Shigella → colonies incolores sans H₂S
  • Escherichia coli → colonies roses (lactose +)

7. Identification bactérienne

  • Tests biochimiques :
    • Galerie API 20E
    • TSI, uréase, citrate…
  • Identification automatisée possible (VITEK, MALDI-TOF)

8. Antibiogramme

  • Réalisé si bactérie pathogène isolée
  • Méthode :
    • Diffusion sur disque (Kirby-Bauer)
  • Permet de guider le traitement antibiotique

9. Interprétation

  • Présence ou absence de bactéries pathogènes
  • Corrélation avec les symptômes cliniques
  • Certaines bactéries peuvent être commensales → donc prudence

Points importants

  • Éviter prélèvement après antibiothérapie (faux négatifs)
  • Prélèvements répétés parfois nécessaires
  • Recherche ciblée selon contexte (voyage, épidémie…)

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